细胞凋亡（Apoptosis）又称细胞程序性死亡（Programmed cell death），是一种为维持内环境稳定，由基因控制的细胞自主的有序的主动的死亡。凋亡的紊乱与肿瘤、自身免疫性疾病的发生具有直接或间接的关系，在细胞领域具有重要的研究价值。

细胞凋亡是个复杂的过程，不同的凋亡时期具有不同的检测方法。

其中磷脂酰丝氨酸（PS）外翻分析（Annexin V）是检测细胞早期凋亡最常见的方法。原理很简单，即细胞发生凋亡时，位于细胞膜内的PS外翻到细胞膜表面，暴露于细胞外环境中。和偶联荧光染料的Annexin V特异性结合，同时加上核酸染料（它只能穿透死细胞膜）如PI，这样便可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。

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接下来，小柏为您讲解下Annexin V检测凋亡的详细实验步骤。

01细胞处理和染色

细胞处理是凋亡实验中很重要的步骤，必须在单细胞悬液的状态下进行后续的染色。

对于贴壁细胞，用不含EDTA的胰酶进行消化（注：对于比较难消化的细胞，也可以用含低浓度EDTA的胰酶消化，最后细胞多洗几遍，减小EDTA鳌合钙离子产生的影响），收集细胞悬液进行计数；悬浮细胞可直接计数；对于组织样本，需要将其消化成单细胞悬液才可以进行后续实验。具体实验流程如下：

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这里要特别提醒一下大家——

贴壁细胞进行消化的时候，消化时间过长会造成细胞膜的损伤，导致Annexin V假阳性；PI具有细胞毒性，染色时间也不易过长，尽量在一小时内上机。

02实验设计

流式的对照一直很令人头疼，空白管、阴性管、单阳管、阳性管都是啥意思？它们的目的是什么？每一次实验都需要做吗？别急，今天小柏来为你们解惑。

细胞用流式仪器检测时，需要在一个合适的实验模板里进行信号的收集，即模板里包含所有染色抗体对应的荧光通道，而且包括散射光和荧光通道在内的各个通道的电压要合适（信号既可以被清晰地看到，又不会跑到视野外）。

因此，在第一次做凋亡实验时，需要用空白对照和单阳管调节电压和补偿，建立一个新的合适的实验模板，后续的实验（相同的仪器、同一批细胞系、同样的染色方案条件）可以不必再重新设置电压和补偿。阴性管和阳性管在实验条件稳定、细胞分群明显的情况下，也可以不必再使用。

具体的实验设计方案如下：

• 空白管：未经任何处理的阴性对照组细胞，不加Annexin V和PI。用于调节电压。

• 单染管：经过处理的发生凋亡的细胞，分别加Annexin V和PI。用于调节补偿。

• 阴性管：未经任何处理的细胞，加Annexin V和PI。目的是排除细胞自身凋亡以及实验操作过程带来的凋亡和坏死。用于确定正常细胞状态，排除假阳性。

• 阳性管：经过处理的确定发生凋亡的细胞，加Annexin V和PI。用于确认试剂、仪器、操作没有问题。

• 检测管：处理的细胞，加 Annexin V和PI。用空白管和单染管调节好电压和补偿后，获得所需要的流式数据。

03数据分析

流式数据的分析是获得结果的最后一步，一定要重视，否则实验就前功尽弃了。我们应该如何操作，才能得到漂亮准确的流式图呢？

简单总结，就是调节补偿、设门和结果统计。

• 调节补偿

补偿的调节是因为荧光通道之间存在光谱重叠的现象，需要把目的通道里任何其他的干扰信号去掉。

前面提到用单阳管来调节补偿，在流式细胞仪上可以手动调节，也可以自动调节。当然，也可以采集完所有数据之后，用FlowJo V10软件调节，不过小柏还是最喜欢在仪器上调节补偿，因为调节好补偿收集数据时，我立马就可以知道这次的实验结果好不好了。

• 设门

补偿调节后，接下来就是设门了。

首先，在FSC和SSC图上，圈出目的细胞群，注意不要圈到碎片；其次，在Annexin V和PI荧光通道画十字门，以对照组细胞同时加了Annexin V和PI的阴性对照组来界定门的位置，结合数据的实际情况进行微调。同一批实验，最好用统一的十字门。其实Annexin V凋亡实验，通常情况下细胞分群还是挺好的，比较容易设门。

下面流式图是用四正柏的Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒检测的一个凋亡样本。

我们通过十字门，将细胞分为了四个象限，分别对应了四种不同的染色情况。左下象限是健康的活细胞，用Annexin V-/PI-表示，右下象限是早期凋亡的细胞，用Annexin V+PI-表示，右上象限为晚期凋亡的细胞，但实际情况中，也包括了一部分坏死细胞，但是比例较少，用Annexin V+PI+表示，左上象限是非程序化死亡的细胞（不经凋亡，没有PS外翻，但是细胞存在机械性坏死，导致核酸染料进入），用Annexin V-PI+表示。

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小柏在这里再跟大家强调一下：主细胞圈门的时候，一定要排除掉细胞碎片。同时，有的细胞诱导凋亡后皱缩明显，侧群也会存在凋亡的信号，如下图所示，这样的信号也要圈进来，避免凋亡信号丢失而影响后续的结果分析。

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• 结果统计

凋亡实验中主要分析早凋的细胞比例，不过具体也要看实验目的，做三个重复之后，便可以统计数据了。

最后，小柏给大家补充说明一些凋亡实验中经常遇到的问题。

01 我的细胞转染了带GFP的质粒，哪个试剂盒比较适合我？如何进行实验设计？

推荐用Annexin V Alexa Fluor647/PI凋亡检测试剂盒，不仅避开了FITC通道，而且Alexa Fluor 647和PE通道减少了调节补偿这个步骤。

实验设计如下：

1.空白细胞，不带转染GFP的质粒，用于调节电压。

2.转染GFP的空质粒对照组，不加Annexin V和PI，用于调节补偿。

3.转染带有一段基因的GFP质粒，不加Annexin V和PI，用于设门对照。

4.转染带有一段基因的GFP质粒，加Annexin v和PI，即实验组。

02 细菌和藻类可以用Annexin V试剂盒检测凋亡吗？

都可以的。用植物检测凋亡时要先用果胶酶去除细胞壁。

03 Annexin V方法检测凋亡适合所有的细胞吗？

某些细胞的细胞膜外表面带有大量的PS，因此不能使用该方法（比如巨核细胞、血小板、某些骨髓系细胞）。

04 细胞上清需要收集吗？

需要收集，因为上清也会有一些凋亡的细胞。最后与消化的单细胞悬液混合，进行染色。

05 Annexin V-PI+象限属于什么细胞？

一般认为是机械性坏死细胞。对于悬浮细胞，多数都是细胞膜丢失得差不多了；而对于组织细胞或贴壁细胞，则多为消化、刮擦等导致的膜损伤。Annexin V-PI+细胞因过度消化、高速离心、大力吹打，而使膜受损。受损只是通透性增强，PS并没外翻。所以，小分子的PI进入，蛋白大分子的Annexin V被挡在外面。一般Annexin V-PI+细胞比例建议控制在5%以内。

06 MTT法在酶标仪上检测时，有明显的药物浓度趋势，但用流式检测时，却看不到这样的趋势，这是什么原因？

MTT和Annexin V检测原理不同，它主要是用于测细胞活力，反映细胞线粒体内琥珀酸脱氢酶的活性，并不完全代表细胞的凋亡、周期阻滞或坏死。一些死细胞、碎片会造成OD值增高，产生假阳性结果。最好以流式检测为准，两种方法检测趋势一致时，实验结果更易被信服。

07 凋亡结果怎样可以接受？

一般情况下，正常细胞的早期凋亡率约5%左右，经凋亡诱导的细胞的早期凋亡率明显上升，有的20-30%，有的30-40%，不同类型的细胞有差异；即使同种细胞，前后两次实验的细胞状态不一致时，凋亡率也会不一致，通常三次实验后做统计学分析。

08 如果细胞带有RFP荧光或者用阿奇霉素处理过，该选用什么试剂盒？

避免使用PI通道的试剂盒。推荐用Annexin V-FITC/7-AAD凋亡检测试剂盒（FXP145）和Annexin V-Alexa Fluor 488/7-AAD 凋亡检测试剂盒（FXP146）。

09 血液样本检测凋亡该如何处理？

务必去除血液中的血小板，因为血小板含有PS，容易与Annexin V结合，从而干扰实验结果。可以使用含有EDTA的缓冲液200g离心去除血小板。

10 如何同时进行Annexin V凋亡染色和表面染色？

建议Annexin V和表面染色分开进行。表面染色后，在PBS里洗细胞，离心，然后在Binding Buffer（含钙离子）里进行Annexin V染色。

今天有关Annexin V凋亡实验的内容就结束了，如果大家有问题，欢迎随时咨询小柏，或者直接联系您身边的四正柏人，我们将竭力为您提供最优质的产品和服务。

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Annexin V检测凋亡产品线：

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